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Caspase-6酶活性测定试剂盒 BES2020CDD

Caspase-6 Colorimetric Assay Kit

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Caspase-6酶活性测定试剂盒

产品描述:

Caspase是参与细胞凋亡过程的蛋白酶家族,包含10多个成员。Caspase-4可以和Apaf-1相互作用,并参与细胞色素c导致的Caspase-3激活,也可以和caspase-14相互作用。测定原理:Caspase-6特异水解多肽底物LEVD-pNA (Leu-Glu-Val-Asp-p-nitroanilide),释放的游离硝基苯胺pNA在405 nm有最大吸光度。采用可见光光度比色法测定pNA而得到Caspase活性。适用于检测哺乳动物组织、细胞Caspase-4活性。


组成 (所示为100次检测, 50次检测试剂量减半)

1. 裂解缓冲液20ml, 4 ºC

2. 反应缓冲液10ml, 4 ºC

3. 底物 0.5ml,-20 ºC避光

4. 10mMpNA标准品0.2ml,-20 ºC避光

试剂常温运输,到达后按要求储存,1年内稳定。


所需仪器:

可见光分光光度计配100μl比色杯,或酶标仪。最佳波长405 nm,也可测OD400~450 nm但灵敏度略降。


组织细胞准备:

Caspase活性测定值低,最常见原因是未发生凋亡或细胞量太少,其次是观测时间点不恰当。诱导凋亡时,并非剂量越大时间越长Caspase活性就越高。可设置不同剂量和时间点如0、2、4、8、16、24小时,以检测最佳的观察点。通常2×107细胞或2mg组织裂解于1ml可产生1~3mg/ml蛋白。初次测定时,单个测定反应可加~200μg蛋白物对应于2×106细胞或2个孔的6孔板细胞。最少,单个测定反应需加20μg蛋白对应于2×105个细胞或2个孔的12孔板细胞。勿用丝氨酸蛋白酶抑制剂如E-64和leupeptin以免抑制Caspase活性。

1. (1)细胞裂解:1000g 5分钟收集细胞,吸尽上清。每2~10×106细胞加50~100µl裂解液震荡裂解,冰浴10分钟,再次震荡。(2)组织裂解:3~10mg组织加100 µl裂解液放入小型玻璃匀浆器,上下匀浆30次。转移匀浆液于离心管。

2. 4 ºC 12,000g 10分钟,取上清测定,或-70 ºC保存。

3. 蛋白定量:用Bradford法测定蛋白浓度。裂解液含还原剂不宜采用BCA法。应使蛋白浓度达到1-3 mg/ml,相当于每10 μl待测样品含10-30μg蛋白,否则应增加细胞用量。


测定pNA标准曲线:

1. 用反应缓冲液稀释10mM pNA标准品为200, 100, 50, 25, 12.5, 6.25, 3.125μM。设置不加pNA的零管。

2. 每一浓度取100 μl加入96孔板或100μl比色杯,测定405nm吸光度OD值。

3. 每一浓度标准管OD405值为x轴,对应的pNA浓度为y轴,用Excel制作pNA浓度对OD405值的标准曲线。


样品测定操作:

1. 按下表设置96孔板反应体系。底物最后加入以使各管反应起始时间相同。设置不加样品的空白对照管。酶活力不足或过高,可增加或减少样品。

2. 盖紧96孔板盖子并用封口膜密封。37 ºC反应2小时,肉眼可见颜色变黄时的OD405值约为0.2,此时即可测定。颜色变化不明显可延长反应或过夜,但酶活性较强时,孵育时间过长将导致反应失去线性关系。

3. 样品管OD405减去空白对照OD405,为样品Caspase水解底物产生的pNA吸光度。根据标准曲线计算其含量,并以蛋白浓度校正之。

4. 测得的Caspase酶活性表示方法有两种。(1) Caspase活性增加的百分比:100% × 实验处理组OD / 实验对照组OD,简单而可靠。(2)样品Caspase酶活力单位/mg protein,精确但计算较复杂,参见说明。

反应体系参考表 (允许适当调整样品加样量)



无样品

空白对照

高酶活性

样品

低酶活性

样品

反应缓冲液μl

95

85

60

待测样品μl

10

35

底物 μl

5

5

5

总体积μl

100

100

100


说明:

1. Caspase酶活力单位定义:即当底物饱和时,一个Caspase酶活力单位定义为37 ºC 1小时水解pNA底物,产生1nmol游离pNA。根据pNA标准曲线和样品OD值,可计算出Caspase酶活力单位。

2. 除了处理组外,可设置阳性凋亡诱导剂组,阴性实验对照可包括不具有凋亡诱导作用的试剂(如果能得到)处理组、溶剂对照组、或凋亡诱导零时间点。

注意事项:该产品仅供科研实验使用,未经允许不得用于其它用途!


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