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NAD-苹果酸酶(NAD-ME)测试盒 BES-BK2019B

NAD-苹果酸酶(NAD-ME)测试盒

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NAD-苹果酸酶(NAD-ME)测试盒

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义

ME 广泛存在于微生物、培养细胞、动物和植物胞浆中,尤其在植物组织中活性较高。ME 催化苹果酸氧化脱羧的可逆反应,产生丙酮酸和 CO2,以及伴随 NAD(P)+的还原反应,是苹果酸代谢的关键酶。ME 活性与生物合成和抗氧化密切相关。近年来植物 ME 活性测定较多,已经成为抗氧化研究的热点。根据辅酶专一

性和对底物特异性的不同,可将 ME 分为 NAD-ME(EC1.1.1.38)和 NADP-ME(EC1.1.1.40)。

测定原理

NAD-ME 催化 NAD+还原成 NADH,在 340nm 下测定 NADH 增加速率。

需自备的仪器和用品:

紫外分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1 mL 石英比色皿和蒸馏水。

试剂的组成和配制

提取液:60mL×1 瓶,4℃保存。;

试剂一:液体 40mL×1 瓶,4℃保存;

试剂二:液体 20mL×1 瓶,4℃保存;

试剂三:粉剂×1 支,4℃保存;用时加 2mL 蒸馏水充分溶解备用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

试剂四:粉剂×1 支,-20℃保存;用时加 1mL 蒸馏水充分溶解备用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。

样本的前处理

1、细菌、细胞或组织样品的制备:

细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104 个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。

2、血清(浆)样品:直接检测。

测定步骤

1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。

2、 将试剂一、二、三和四置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min 以上。如果一次性测定样本较多,可将试剂一、二、三和四按下表比例配成混合液后置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 10min 以上(现配现用)。

3、 操作表:

试剂名称(μL) 测定管

image

将上述试剂按顺序加入 1 mL 石英比色皿中,混匀,立即记录 340 nm 波长下初始吸光度 A1 和反应 1min 后的吸光度 A2,计算 ΔA=A2-A1。

注意:如果 ΔA<0.005,可将反应时间延长到 2 分钟或 5 分钟。

NAD-ME 活性计算

(1)按样本蛋白浓度计算:

单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

NAD-ME(nmol/min/mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(V 样×Cpr) ÷T= 4823×ΔA÷Cpr此法需要自行测定样本蛋白质浓度。

(2)按样本鲜重计算:

单位的定义:每 g 组织每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

NAD-ME(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T = 4823×ΔA÷W

(3)按细菌或细胞密度计算:

单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟生成 1 nmol NADH 定义为一个酶活力单位。

NAD-ME(nmol/min/104cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(500×V 样÷V 样总) ÷T =9.646×ΔAV 反总:反应体系总体积,9×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.03 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,1 min;Cpr:样本蛋白质

浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。


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