游离脂肪酸含量测试盒-测植物组织
注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定。
测定意义:
FFA 既是脂肪水解的产物,又是脂肪合成的底物。FFA 的浓度与脂类代谢、糖代谢、内分泌功能有关,也可反映食物贮藏中的品质变化。
测定原理:
在弱酸性条件下,FFA 与铜盐反应生成铜皂,在 715nm 处有特征吸收峰,在一定范围内游离脂肪酸含量与显色程度呈线性关系。
自备仪器和用品:
研钵、台式离心机、震荡仪、可见分光光度计、1mL 玻璃比色皿。
试剂组成和配制:
试剂一:液体 60mL×1 瓶,4℃保存。
试剂二:液体 25mL×1 瓶,4℃保存。
试剂三:液体 25mL×1 瓶,4℃保存。
样品中 FFA 提取:
组织用蒸馏水冲洗干净后,用吸水纸吸取表面水分,捣碎后按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~12 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1.2mL 试剂一)加入试剂一,震荡提取 3h,8000g,4℃离心 10min,取上清液待测。
测定操作:
1. 分光光度计预热 30 min,调节波长到 715 nm。
2. 对照管:取上清液 1mL,加 0.5mL 试剂二,充分震荡 5min,室温静置 5min,取上层 0.8mL于 1mL 玻璃比色皿,调零。
3. 测定管:取上清液 1mL,加 0.5mL 试剂三,充分震荡 5min,室温静置 5min,取上层 0.8mL于 1mL 玻璃比色皿,测定吸光值,记为 A。
注意:对照管每个样品都需要测定一次。
FFA 含量计算公式:
标准曲线:y=0.0075 x+ 0.0055,R2=0.994
(1)按样本蛋白浓度计算
FFA(nmol/mg prot)= (A-0.0055)÷0.0075×V1÷(V1×Cpr)=133×(A-0.0055)÷Cpr
(2)按样本质量计算
FFA(nmol/g 鲜重)= (A-0.0055)÷0.0075×V1÷(V1÷V2×W)=160×(A-0.0055)÷WV1:加入样本体积,1mL;V2:提取液体积,1.2mL; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样品质量,g。
注意事项:
1. 蛋白含量不可直接用提取的上清液直接测定,可用蒸馏水或缓冲液或生理盐水选用本公司的 BCA 法蛋白含量测定试剂盒。
2. 最低检出限为 2 nmol/mL。