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游离胆固醇(FC)含量测试盒 BES-BK2433B

游离胆固醇(FC)含量测试盒

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游离胆固醇(FC)含量测试盒

注意:正式测定之前选择 2-3 个预期差异大的样本做预测定。

测定意义:

FC 是构成细胞膜的主要成分,也是合成肾上腺皮质激素、性激素、胆汁酸及维生素 D 等生理活性物质的重要原料。FC 浓度可作为脂代谢的指标。

测定原理:

FC 氧化酶催化 FC 生成△4-胆甾烯酮和 H2O2,过氧化物酶催化 H2O2、4-氨基安替比林和酚生成红色醌类化合物,在 500nm 有吸收峰,其颜色深浅与 FC 含量成正比。

自备仪器和用品:

可见分光光度计、水浴锅、可调式移液枪、1mL 玻璃比色皿、异丙醇和蒸馏水。

试剂组成和配制:

试剂一:异丙醇 50mL(自备);

试剂二:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;

试剂三:粉剂×1 瓶,4℃保存;

试剂四:液体 50μL×1 瓶,4℃保存;

标准品:液体 1mL×1 支,浓度为 0.5 μ mol/mL,4℃保存。

FC 的提取:

1、组织:按照组织质量(g):试剂一体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 试剂一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心 10min,取上清置冰上待测。

2. 细菌、真菌:先收集 400-500 万细胞或细菌到离心管内,弃上清,加 1mL 试剂一,超声波破碎 1min(强度 20%,超声 2s,停 1s),即 FC 待测液。

3.血清(浆)样品:直接测定。

测定操作:

1. 分光光度计预热 30 min,调节波长到 500 nm,蒸馏水调零。

2.FC 工作液的配制:临用前,吸取约 0.8mL 试剂二分别加入试剂三和试剂四瓶中,充分溶解后再全部转移回试剂二瓶中,充分混匀,FC 工作液置于 37℃水浴 10min。用不完的工作液 4℃保存一周。

3. 标准管:依次在 1mL 玻璃比色皿中加入 250μL FC 标准液和 750μL FC 工作液,混匀,静置 24h 后于 500nm 测定 A 标准管。

4. 测定管:依次在 1mL 玻璃比色皿中加入 250μL FC 待测液和 750μL FC 工作液,混匀,静置 24h 后于 500nm 测定 A 测定管。

注意:

1、 标准管只需测定一次。

2、 静置 24h 后部分样本可能出现沉淀,可经过 10000g,25℃离心 5min 后再检测。

计算公式:

1. 血清(浆)中 FC 含量计算:

FC 含量(μmol /dL)= C 标准液×A 测定管÷A 标准管×100mL

=50×A 测定管÷A 标准管C 标准液:0.5μmol/mL;100 mL:1dL=100 mL。

2. 组织中 FC 含量计算:

(1)按样本蛋白浓度计算

FC 含量(μmol / mg prot)= C 标准液×A 测定管÷A 标准管÷Cpr = 0.5×A 测定管÷A 标准管÷Cpr

(2)按样本鲜重计算

FC 含量(μmol / g 鲜重)= C 标准液×A 测定管÷A 标准管÷W = 0.5×A 测定管÷A 标准管÷WC 标准液:0.5μmol/mL;Cpr:样本蛋白浓度,mg/mL;W:样本质量,g/mL

3. 细胞、细菌中 FC 含量计算:

FC 含量(μmol /104 cell)= C 标准液×A 测定管÷A 标准管÷细菌或细胞(104 cell /L)=0.5×A 测定管÷A 标准管÷细菌或细胞(104 cell /L)C 标准液:0.5μmol/mL。最低检出限为 1nmol/mL。


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