丙酮酸激酶(PK)测试盒
正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定
测定意义
PK(EC 2.7.1.40)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,催化糖酵解过程中的最后一步反应,是糖酵解过程中的主要限速酶之一,也是产生 ATP 的关键酶之一,因此测定PK 活性具有重要意义。
测定原理
PK 催化磷酸烯醇式丙酮酸和 ADP 生成 ATP 和丙酮酸,乳酸脱氢酶进一步催化 NADH 和丙酮酸生成乳酸和 NAD+,在 340nm 下测定 NADH 下降速率,即可反映 PK 活性。
需自备的仪器和用品
紫外分光光度计、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、1mL 石英比色皿、研钵、冰和蒸馏水
试剂的组成和配制
提取液:60mL×1 瓶,4℃保存;
试剂一:液体 50mL×1 瓶,4℃保存;;
试剂二:粉剂×2 瓶,-20℃保存;
试剂三:液体 25μL×2 支,4℃保存;
样本的前处理
1、细菌或培养细胞:先收集细菌或细胞到离心管内,离心后弃上清;按照细菌或细胞数量(104个):提取液体积(mL)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细菌或细胞加入 1mL 提取液),超声波破碎细菌或细胞(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3s,间隔 10s,重复 30 次);8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
2、组织:按照组织质量(g):提取液体积(mL)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1mL 提取液),进行冰浴匀浆。8000g 4℃离心 10min,取上清,置冰上待测。
3、血清(浆)样品:直接检测。
测定步骤
1、 分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 340nm,蒸馏水调零。
2、 样本测定
(1)试剂二的配制:临用前取试剂二一瓶,加入 22.5mL 试剂一和 2.65mL 蒸馏水充分溶解,置于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)水浴 5min;现配现用。
(2)试剂三的配制:临用前取试剂三一支,加入 1.5mL 蒸馏水充分溶解待用;现配现用。
(3)在 1mL 石英比色皿中加入 50μL 样本、50μL 试剂三和 900μL 试剂二,混匀,立即记录 340nm 处 20s 时的吸光值 A1 和 2min20s 后的吸光值 A2,计算 ΔA=A1-A2。
PK 活性计算
1、血清(浆)中 PK 活力的计算:
单位的定义:每毫升血清(浆)每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
PK(nmol/min/mL)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷V 样÷T=2613×ΔA
2、组织、细菌或细胞中 PK 活力的计算:
(1)按样本蛋白浓度计算:
单位的定义:每 mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
PK(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=2613×ΔA÷Cpr
(2)按样本鲜重计算:
单位的定义:每 g 组织每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
PK(nmol/min /g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(W× V 样÷V 样总)÷T=2613×ΔA÷W
(3)按细菌或细胞密度计算:
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol 的 NADH 定义为一个酶活力单位。
PK(nmol/min /104cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(500×V 样÷V 样总)÷T=5.226×ΔAV 反总:反应体系总体积,9.75×10-4L;ε:NADH 摩尔消光系数,6.22×103L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.03 mL;V 样总:加入提取液体积,1 mL;T:反应时间,2min;Cpr:样本蛋白质浓度,mg/mL;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。