可溶性酸性转化酶（S-AI）测试盒

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定

测定意义：

蔗糖转化酶（Invertase，Ivr）催化蔗糖不可逆地分解为果糖和葡萄糖，是高等植物蔗糖代谢关键酶之一。根据最适 pH，Ivr 分为酸性转化酶（AI）和中性转化酶（NI）两种类型。AI 的最适 pH 为 3～5。AI 分为可溶性 AI(S-AI)和细胞壁不溶性 AI（B-AI）两种类型。S-AI 主要存在于细胞液泡或自由空间中，最适 pH 为 4.5~5.0（酸性），通过降解液泡中蔗糖，调节液泡中蔗糖的利用和果实内糖类的积累。

测定原理：

S-AI 催化蔗糖降解产生还原糖，进一步与 3,5－二硝基水杨酸反应，生成棕红色氨基化合物，在 510nm 有特征光吸收，在一定范围内 510nm 光吸收增加速率与 S-AI 活性成正比。

自备用品：

可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、微量石英比色皿/96 孔板、研钵、冰和蒸馏水。

试剂组成和配制：

提取液：液体 100mL×1 瓶，4℃保存;

试剂一：液体 20mL×1 瓶，4℃保存;

试剂二：粉剂×1 瓶，4℃保存；临用前加入 10mL 试剂一充分溶解备用；用不完的试剂 4℃保存;

试剂三：液体 15mL×1 瓶，4℃保存；

粗酶液提取：

按照组织质量（g）：提取液体积(mL)为 1：5~10 的比例（建议称取约 0.1g 组织，加入 1mL提取液），进行冰浴匀浆。12000g 4℃离心 10min，取上清，置冰上待测。

测定步骤和加样表：

1、 分光光度计或酶标仪预热 30min 以上，调节波长至 510nm，蒸馏水调零。

2、样本测定，（在 EP 管中依次加入下列试剂）：

混匀，95℃水浴 10min（盖紧，以防止水分散失），流水冷却后充分混匀，取 200μL 至微量石英比色皿或 96 孔板中， 510nm 处记录各管吸光值 A，如果吸光值大于 2，可以用蒸馏水稀释后测定(计算公式中乘以相应稀释倍数)，ΔA=A 测定-A 对照。每个测定管需设一个对照管。

S-AI 活性计算：

a.用微量石英比色皿测定的计算公式如下

标准条件下测定的回归方程为 y = 0.0016x -0.001；x 为标准品浓度（μg/mL），y 为吸光值。

（1）按蛋白浓度计算：

单位的定义：37℃每 mg 蛋白每分钟产生 1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

S-AI 活性（μg/min/mg prot）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T=20.8×(ΔA +0.001)÷Cpr

（2）按鲜重计算：

单位的定义：37℃每 g 组织每分钟产生 1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

S-AI 活性（μg/min/g 鲜重）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0016×V1]÷(W×V1÷V2) ÷T=20.8×(ΔA +0.001)÷WV1：加入反应体系中样本体积，0.05mL；V2：加入提取液体积，1mL；T：反应时间，30min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本鲜重，g。

b.用 96 孔板测定的计算公式如下

标准条件下测定的回归方程为 y = 0.0008x -0.001；x 为标准品浓度（μg/mL），y 为吸光值。

（1）按蛋白浓度计算：

单位的定义：37℃每 mg 蛋白每分钟产生 1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

S-AI 活性（μg/min/mg prot）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0008×V1]÷(V1×Cpr ) ÷T=41.6×(ΔA +0.001)÷Cpr

（2）按鲜重计算：

单位的定义：37℃每 g 组织每分钟产生 1μg 还原糖定义为一个酶活性单位。

S-AI 活性（μg/min/g 鲜重）＝[(ΔA +0.001) ÷0.0008×V1]÷(W ×V1÷V2)=41.6×(ΔA +0.001) ÷WV1：加入反应体系中样本体积，0.05mL；V2：加入提取液体积，1mL；T：反应时间，30min；Cpr：样本蛋白质浓度，mg/mL；W：样本鲜重，g。